| | SLO | ENG | Piškotki in zasebnost

Večja pisava | Manjša pisava

Iskanje po katalogu digitalne knjižnice Pomoč

Iskalni niz: išči po
išči po
išči po
išči po
* po starem in bolonjskem študiju

Opcije:
  Ponastavi


1 - 2 / 2
Na začetekNa prejšnjo stran1Na naslednjo stranNa konec
1.
Optimizacija metode obogatitve fosforiliranih peptidov za analizo z masno spektrometrijo : magistrsko delo
Doroteja Golob, 2024, magistrsko delo

Opis: Dinamična fosforilacija in defosforilacija proteinov sta esencialna regulatorna mehanizma, ki regulirata večino celične fiziologije, zato ni presenetljivo, da so motnje v njunem delovanju pogosto vzrok za nastanek in napredovanje številnih bolezni. Fosfoproteomika je biološko pomembno področje, ki za analizo fosfoproteinov pogosto uporablja tekočinsko kromatografijo, sklopljeno s tandemsko masno spektrometrijo (LC MS/MS). Pred analizo z LC-MS/MS je ključnega pomena obogatitev fosforiliranih peptidov, ki zviša relativno količino ciljnih molekul in s tem poveča občutljivost metode. V magistrski nalogi smo optimizirali metodo obogatitve fosforiliranih peptidov za analizo z masno spektrometrijo, pri čemer smo izhajali iz nezadovoljivega protokola proizvajalca. Na voljo smo imeli dva obogatitvena materiala: PureCube Fe-NTA MagBeads in PureCube Ti-NTA MagBeads, katerih kapaciteto smo primerjali. Ugotovili smo, da je v naši izvedbi eksperimenta veliko obetavnejša obogatitev s Ti-NTA magnetnimi kroglicami, ki so že na začetku optimizacije ponujale zadovoljiv delež obogatenih fosfopeptidov, medtem ko bi za uporabo Fe-NTA morali bistveno spremeniti sestavo vezavnega pufra. Optimizirali smo razmerje med količino Ti-NTA in maso vhodnih peptidov ter delež glikolne kisline (GA) v vezavnem pufru. Rezultati kažejo, da z večjo količino afinitetnega materiala obogatimo več fosforiliranih peptidov, brez zmanjšanega deleža le-teh v vzorcu, zato smo kot optimalno določili dvakratno količino Ti-NTA glede na prvotni protokol. Nadalje smo ugotovili, da dodatek GA občutno vpliva na specifičnost vezave, vendar večji delež le-te hkrati obogati manj fosfopeptidov. Kompromis med zvišanjem specifičnosti in večjim številom fosfopeptidov smo tako dosegli pri uporabi vezavnega pufra z 0,2 % deležem GA. Na podlagi alternativnih protokolov in teorije smo prilagodili tudi inkubacijski čas vezave in elucije fosfopeptidov. Nadalje smo ugotavljali minimalno maso vhodnih peptidov, iz katere še dobimo zanesljivo kvantifikacijo fosfopeptidov. Ugotovili smo, da je ta lahko veliko nižja kot navaja proizvajalec; minimalno maso smo postavili pri 50 g, saj nižje mase dajejo zelo variabilne in s tem nezanesljive rezultate. Optimizirano metodo smo testirali na peptidih iz celic, gojenih v različnih pogojih. Analizirali smo fosfoproteom celic, tretiranih s kemoterapevtikom doksorubicin, napram celicam v normalnih rastnih pogojih. Statistična analiza je pokazala, da se je ob izpostavljenosti doksorubicinu količina številinih fosforiliranih peptidov statistično značilno povečala. Uporabljen masni spektrometer se je izkazal za dovolj občutljivega, da te spremembe zazna, optimizirana metoda pa kot učinkovita. Metoda je tako primerna za proučevanje fosfoproteoma, ko imamo opravka z manjšim številom vzorcev, pred širšo uporabo pa bo potrebna dodatna optimizacija.
Ključne besede: proteomika, fosforilacija, obogatitev fosfopeptidov, masna spektrometrija
Objavljeno v DKUM: 12.09.2024; Ogledov: 21; Prenosov: 59
.pdf Celotno besedilo (3,68 MB)

2.
Optimizacija priprave proteinov krvne plazme z razgradnjo na peptide v raztopini za proteomsko analizo z masno spektrometrijo : diplomsko delo univerzitetnega študijskega programa I. stopnje
Eva Zajšek, 2023, diplomsko delo

Opis: V diplomskem delu sta predstavljena danes najpogostejša načina priprave vzorcev proteinov z razgradnjo na peptide za proteomsko analizo z masnim spektrometrom: SDS PAGE in stopenjska priprava v raztopini, ki vključuje denaturacijo, redukcijo, alkilacijo proteinov in njihovo cepitev na peptide s tripsinom. Naš namen je bil skrajšati, poenostaviti in poceniti v znanstveni literaturi opisani protokol stopenjske priprave vzorcev proteinov v raztopini, vendar kljub temu ohraniti dobro razgradnjo proteinov in identifikacijo z masnim spektrometrom. V delu je tako podrobneje prikazana analiza optimizacije priprave vzorcev v raztopini: različni reagenti, različne koncentracije, združevanje korakov, dodajanje korakov, različne temperature in različno dolge inkubacije. Rezultati kažejo, da protokola ne moremo skrajšati na račun časa inkubacije tripsina, vendar pa lahko to storimo z združitvijo korakov denaturacije, redukcije in alkilacije ter skrajšanim časom inkubacije teh korakov. Kot boljši alkilacijski reagent se je v primerjavi z jodoacetamidom (IAM) zaradi manjšega števila neželenih modifikacij izkazal kloroacetamid (CAM), za oba reagenta pa je primerna koncentracija pod 10 mM. Ugotovili smo, da dodaten korak prekinitve alkilacije z ditiotreitolom (DTT) zaradi prihranka časa in kemikalij ni primeren, saj ne zmanjša števila neželenih modifikacij. Povzeti protokol smo nekoliko pocenili z zamenjavo alkilacijskih reagentov, saj je kloroacetamid (CAM) cenejši in ga je na voljo za več eksperimentov, sicer pa ceno celotnega eksperimenta določa predvsem poraba tripsina, čigar cena znaša okrog 2,23 EUR za 1 μL.
Ključne besede: proteomika, SDS PAGE, in-solution-digestion, reagenti, masna spektroskopija, priprava vzorcev
Objavljeno v DKUM: 31.03.2023; Ogledov: 649; Prenosov: 58
.pdf Celotno besedilo (4,45 MB)

Iskanje izvedeno v 0.02 sek.
Na vrh
Logotipi partnerjev Univerza v Mariboru Univerza v Ljubljani Univerza na Primorskem Univerza v Novi Gorici